화학공학소재연구정보센터
Polymer(Korea), Vol.42, No.1, 112-118, January, 2018
알지네이트 스폰지 및 하이드로젤의 습윤성 창상치유 특성
Moisture Wound Healing Characteristics of Alginate Sponge and Hydrogel
E-mail:
초록
건조/가교법으로 제조한 알지네이트 스폰지 및 하이드로젤의 물리적, 생물학적 특성 및 창상치유 특성을 고찰하였다. 하이드로젤은 스폰지 대비 높은 평형 함수율을 보유하였고, 자체적으로 수분을 함유하고 있기 때문에 상대적으로 우수한 습윤 창상치유 환경을 제공할 수 있었다. 알지네이트 스폰지 및 하이드로젤의 사이토카인 결속효과에 기인하여 대식세포로부터 분비되는 전염증성 사이토카인의 함량이 감소됨을 확인하였으며, 특히 하이드로젤의 사이토카인 억제효과가 더욱 두드러지게 나타났는데, 이는 보다 팽윤된 상태에서 알지네이트 분자의 사이토카인에 대한 결속력이 증가함을 의미한다. 창상형성 초기 하이드로젤에 의한 창상치유 및 수축 효과가 스폰지에 비해 우수한 것으로 나타났으나, 상피화는 스폰지를 적용했을 때 보다 우세하게 진행되었다. 조직학적 평가와 RNA 발현 분석으로부터 알지네이트 스폰지 및 하이드로젤은 혈관 및 콜라겐 섬유의 형성, 상피조직의 재생 및 단백질의 생성등을 촉진함을 확인하였다.
Alginate sponge and hydrogel were prepared by a drying/crosslinking method and their wound healing characteristics were investigated comparatively. The alginate hydrogel had a higher equilibrium water content than the sponge, providing a moist wound healing condition without absorbing exudate from a wound. The amounts of proinflammatory cytokines released by macrophages were lowered due to the cytokine-binding effects of the alginate sponge and hydrogel. The hydrogel lowered the cytokine level more dominantly than the sponge, suggesting that the affinity of alginate molecules to cytokines increases at a more swollen state. The hydrogel allowed superior wound healing and contraction at the early stage of application. However, epithelialization was conspicuous when the sponge was applied. It was confirmed through histological examination and RNA expression analysis that angiogenesis, formation of collagen fibers, regeneration of epithelium, and production of protein were promoted using the alginate sponge and hydrogel as wound dressing materials.
  1. Dyson M, Young SR, Pendle L, Webster DF, Lang S, J. Invest. Dertol., 91, 434 (1991)
  2. Suzuki Y, Tanihara M, Nishmura Y, Suzuki K, Kakimura Y, Shimizu Y, ASAIO J., 43, 854 (1997)
  3. Winter GD, Nature, 193, 293 (1962)
  4. Hinman CD, Maibach HI, Winter GD, Nature, 200, 377 (1963)
  5. Kim YJ, Park HG, Yang YL, Yoon Y, Kim S, Oh E, Biol. Pharm. Bull., 28, 394 (2005)
  6. Boontheekul T, Kong HJ, Mooney DJ, Biomaterials, 26, 2455 (2005)
  7. Disa JJ, Alizadeh K, Smith JW, Hu Q, Cordeiro PG, Ann. Plast. Surg., 46, 405 (2001)
  8. Davey RB, Sparnon AL, Byard RW, Burns, 26, 393 (2000)
  9. Suzuki YS, Tanihara M, Nishimura Y, Suzuki K, Yamawaki Y, Kudo H, Kakimaru Y, Shimizu Y, J. Biomed. Mater. Res., 48, 522 (1999)
  10. Wiegand C, Heinze T, Hilper UC, Wound Repair Regen., 17, 511 (2009)
  11. Martin P, Science, 276(5309), 75 (1997)
  12. Clark R, Plenum Press, New York, p 1 (1995).
  13. Leibovich SJ, Ross R, Am. J. Pathol., 78, 71 (1975)
  14. March CJ, Mosley B, Larsen A, Cerretti DP, Braedt G, Price V, Gillis S, Henney CS, Kronheim SR, Grabstein K, Conlon PJ, Hopp TP, Cosman D, Nature, 315, 641 (1985)
  15. Delgado AV, McManus AT, Chambers JP, Neuropeptides, 37, 355 (2003)
  16. Beutler B, Cerami A, Nature, 320, 584 (1986)
  17. Leibovich SJ, Polverini PJ, Shepard HM, Wiseman DM, Shively V, Nuseir N, Nature, 329, 630 (1987)
  18. Dinarello CA, Blood, 87, 2095 (1996)
  19. Angele MK, Knoferl MW, Ayala A, Albina JE, Cioffi WG, Bland KI, Chaudry IH, Surgery, 126, 279 (1999)
  20. Trengove NJ, Bielefeldt-Ohmann H, Stacey MC, Wound Repair Regen., 8, 13 (2000)
  21. Kohno T, Brewer MT, Baker SL, Schwartz PE, King MW, Hale KK, Squires CH, Thompson RC, Vannice JL, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 87, 8331 (1990)
  22. Barrick B, Campbell EJ, Owen CA, Wound Repair Regen., 7, 410 (1999)
  23. Trengove NJ, Stacey MC, Macauley S, Bennett N, Gibson J, Burslem F, Murphy G, Schultz G, Wound Repair Regen., 7, 442 (1999)
  24. Mast BA, Schultz GS, Wound Repair Regen., 4, 411 (1996)
  25. Elcin YM, Dixit V, Gitnick G, Artif. Organs, 25, 558 (2001)
  26. Puolakkainen PA, Twardzik DR, Ranchalis JE, Pankey SC, Reed MJ, Gombotz WR, J. Surg. Res., 58, 321 (1995)